Optimización de condiciones de amplificación para la identificación de bovinos, búfalos, ovinos y caprinos por PCR-RFLP
El fraude alimentario se multiplica en todos los niveles, desde etiquetas falsificadas a comida adulterada. Títulos de noticias como “Cierran una pizzería que rellenaba empanadas con carne de perro” (Bs. As), “Una familia vendía carne de caballo por vacuna” (Stgo. Del Est.), “Venden hamburguesas...
Guardado en:
| Autores principales: | , , , |
|---|---|
| Formato: | Documento de conferencia |
| Lenguaje: | Español |
| Publicado: |
Universidad Nacional del Nordeste. Facultad de Ciencias Veterinarias
2022
|
| Materias: | |
| Acceso en línea: | http://repositorio.unne.edu.ar/handle/123456789/50715 |
| Aporte de: |
| id |
I48-R184-123456789-50715 |
|---|---|
| record_format |
dspace |
| spelling |
I48-R184-123456789-507152024-10-23T11:16:48Z Optimización de condiciones de amplificación para la identificación de bovinos, búfalos, ovinos y caprinos por PCR-RFLP Sosa, Fabiana Evangelina Sandoval, Gladis Lilia Almirón, Enrique Celso De Biasio, María Bárbara ADN Alimentos Fraude El fraude alimentario se multiplica en todos los niveles, desde etiquetas falsificadas a comida adulterada. Títulos de noticias como “Cierran una pizzería que rellenaba empanadas con carne de perro” (Bs. As), “Una familia vendía carne de caballo por vacuna” (Stgo. Del Est.), “Venden hamburguesas con carne de caballo” (Bs. As.), son los que nos revelan que no es una realidad ajena a nuestro presente. Pero, para que se pueda hablar de fraude alimentario hace falta que se verifique una “alteración intencionada de las características de un producto de alimentación de forma ilícita y con fines lucrativos” y es entonces cuando la Biología Molecular adquiere gran importancia. Con el objeto de contribuir a solucionar situaciones problemáticas de este tipo, se puso en marcha en el SVBM, la optimización de la técnica de PCR-RFLP para la amplificación de un fragmento común del gen mitocondrial de ARNr12S y posterior digestión con las enzimas HhaI, ApoI y AluI. Se extrajo ADN de cada especie, a partir de muestras de sangre y se realizó la amplificación por PCR (Kocher et al. en 1989) en un volumen final de 50pl, conteniendo: 1X de Buffer de PCR, 1,5mM MgCl2; 0,2pM de cada cebador; 0,2mM de una mezcla equimolecular de dNTPs y 2,5U de Taq ADN polimerasa. En todos los casos se utilizaron 3pl de ADN e igual volumen de agua para el control negativo de amplificación. Las mezclas se sometieron a las siguientes condiciones térmicas de amplificación: desnaturalización inicial a 95°C durante 2 min, seguida de 30 ciclos de desnaturalización a 94°C durante 1 min, pegado de cebadores a 58°C durante 1 min, extensión a 72°C durante 1,5 min y extensión final a 72°C durante 5 min, finalizando con incubación a 4°. Los resultados fueron analizados sometiendo los productos a electroforesis en geles de agarosa 2%, teñidos con bromuro de etidio y visualizados por transiluminación UV y todas las muestras reflejaron uniformemente un producto de amplificación de 456pb correspondiente al amplicón previsto. Para finalizar, se realizó la RFLP usando 10pl de los productos de amplificación obtenidos anteriormente para la digestión con las enzimas de restricción AluI, ApoI y HhaI (en tubos separados por especie y por enzima) en un volumen final de 20pl, conteniendo las siguientes concentraciones finales de reactivos: 1X de buffer de restricción, 2pg de albúmina sérica bovina y 5 unidades de cada enzima de restricción. La incubación se realizó a 37°C (en el caso de Alu I y Hha I) y 50°C (para Apo I) durante 2 horas y como resultado de la digestión enzimática, el tamaño de los fragmentos obtenidos luego de la electroforesis en geles de agarosa 2%, teñidos con bromuro de etidio y visualizados por transiluminación UV fue con AluI: 359 y 97pb en bovinos; 456pb en búfalos, 246 y 210pb en ovinos y caprinos; con HhaI: 247 y 209pb en búfalos y 456pb en bovinos, caprinos y ovinos y con ApoI: 329 y 127pb en ovinos y 456pb en bovinos, búfalos y caprinos. 2022-10-18T15:33:21Z 2022-10-18T15:33:21Z 2016 Documento de conferencia Sosa, Fabiana Evangelina, et al., 2016. Optimización de condiciones de amplificación para la identificación de bovinos, búfalos, ovinos y caprinos por PCR-RFLP. En: XXXVII Sesión de Comunicaciones Científicas. Corrientes: Universidad Nacional del Nordeste. Facultad de Ciencias Veterinarias, p. 1-1. 2451-6732 http://repositorio.unne.edu.ar/handle/123456789/50715 spa openAccess http://creativecommons.org/licenses/by-nc-nd/2.5/ar/ application/pdf p. 1-1 application/pdf Universidad Nacional del Nordeste. Facultad de Ciencias Veterinarias |
| institution |
Universidad Nacional del Nordeste |
| institution_str |
I-48 |
| repository_str |
R-184 |
| collection |
RIUNNE - Repositorio Institucional de la Universidad Nacional del Nordeste (UNNE) |
| language |
Español |
| topic |
ADN Alimentos Fraude |
| spellingShingle |
ADN Alimentos Fraude Sosa, Fabiana Evangelina Sandoval, Gladis Lilia Almirón, Enrique Celso De Biasio, María Bárbara Optimización de condiciones de amplificación para la identificación de bovinos, búfalos, ovinos y caprinos por PCR-RFLP |
| topic_facet |
ADN Alimentos Fraude |
| description |
El fraude alimentario se multiplica en todos los niveles, desde etiquetas falsificadas a
comida adulterada. Títulos de noticias como “Cierran una pizzería que rellenaba
empanadas con carne de perro” (Bs. As), “Una familia vendía carne de caballo por
vacuna” (Stgo. Del Est.), “Venden hamburguesas con carne de caballo” (Bs. As.), son
los que nos revelan que no es una realidad ajena a nuestro presente. Pero, para que se
pueda hablar de fraude alimentario hace falta que se verifique una “alteración
intencionada de las características de un producto de alimentación de forma ilícita y con
fines lucrativos” y es entonces cuando la Biología Molecular adquiere gran importancia.
Con el objeto de contribuir a solucionar situaciones problemáticas de este tipo, se puso
en marcha en el SVBM, la optimización de la técnica de PCR-RFLP para la
amplificación de un fragmento común del gen mitocondrial de ARNr12S y posterior
digestión con las enzimas HhaI, ApoI y AluI. Se extrajo ADN de cada especie, a partir
de muestras de sangre y se realizó la amplificación por PCR (Kocher et al. en 1989) en
un volumen final de 50pl, conteniendo: 1X de Buffer de PCR, 1,5mM MgCl2; 0,2pM
de cada cebador; 0,2mM de una mezcla equimolecular de dNTPs y 2,5U de Taq ADN
polimerasa. En todos los casos se utilizaron 3pl de ADN e igual volumen de agua para
el control negativo de amplificación. Las mezclas se sometieron a las siguientes
condiciones térmicas de amplificación: desnaturalización inicial a 95°C durante 2 min,
seguida de 30 ciclos de desnaturalización a 94°C durante 1 min, pegado de cebadores a
58°C durante 1 min, extensión a 72°C durante 1,5 min y extensión final a 72°C durante
5 min, finalizando con incubación a 4°. Los resultados fueron analizados sometiendo los
productos a electroforesis en geles de agarosa 2%, teñidos con bromuro de etidio y
visualizados por transiluminación UV y todas las muestras reflejaron uniformemente un
producto de amplificación de 456pb correspondiente al amplicón previsto. Para
finalizar, se realizó la RFLP usando 10pl de los productos de amplificación obtenidos
anteriormente para la digestión con las enzimas de restricción AluI, ApoI y HhaI (en
tubos separados por especie y por enzima) en un volumen final de 20pl, conteniendo las
siguientes concentraciones finales de reactivos: 1X de buffer de restricción, 2pg de
albúmina sérica bovina y 5 unidades de cada enzima de restricción. La incubación se
realizó a 37°C (en el caso de Alu I y Hha I) y 50°C (para Apo I) durante 2 horas y como
resultado de la digestión enzimática, el tamaño de los fragmentos obtenidos luego de la
electroforesis en geles de agarosa 2%, teñidos con bromuro de etidio y visualizados por
transiluminación UV fue con AluI: 359 y 97pb en bovinos; 456pb en búfalos, 246 y
210pb en ovinos y caprinos; con HhaI: 247 y 209pb en búfalos y 456pb en bovinos,
caprinos y ovinos y con ApoI: 329 y 127pb en ovinos y 456pb en bovinos, búfalos y
caprinos. |
| format |
Documento de conferencia |
| author |
Sosa, Fabiana Evangelina Sandoval, Gladis Lilia Almirón, Enrique Celso De Biasio, María Bárbara |
| author_facet |
Sosa, Fabiana Evangelina Sandoval, Gladis Lilia Almirón, Enrique Celso De Biasio, María Bárbara |
| author_sort |
Sosa, Fabiana Evangelina |
| title |
Optimización de condiciones de amplificación para la identificación de bovinos, búfalos, ovinos y caprinos por PCR-RFLP |
| title_short |
Optimización de condiciones de amplificación para la identificación de bovinos, búfalos, ovinos y caprinos por PCR-RFLP |
| title_full |
Optimización de condiciones de amplificación para la identificación de bovinos, búfalos, ovinos y caprinos por PCR-RFLP |
| title_fullStr |
Optimización de condiciones de amplificación para la identificación de bovinos, búfalos, ovinos y caprinos por PCR-RFLP |
| title_full_unstemmed |
Optimización de condiciones de amplificación para la identificación de bovinos, búfalos, ovinos y caprinos por PCR-RFLP |
| title_sort |
optimización de condiciones de amplificación para la identificación de bovinos, búfalos, ovinos y caprinos por pcr-rflp |
| publisher |
Universidad Nacional del Nordeste. Facultad de Ciencias Veterinarias |
| publishDate |
2022 |
| url |
http://repositorio.unne.edu.ar/handle/123456789/50715 |
| work_keys_str_mv |
AT sosafabianaevangelina optimizaciondecondicionesdeamplificacionparalaidentificaciondebovinosbufalosovinosycaprinosporpcrrflp AT sandovalgladislilia optimizaciondecondicionesdeamplificacionparalaidentificaciondebovinosbufalosovinosycaprinosporpcrrflp AT almironenriquecelso optimizaciondecondicionesdeamplificacionparalaidentificaciondebovinosbufalosovinosycaprinosporpcrrflp AT debiasiomariabarbara optimizaciondecondicionesdeamplificacionparalaidentificaciondebovinosbufalosovinosycaprinosporpcrrflp |
| _version_ |
1832345879824039936 |