Transglycosylation specificity of Acremonium sp. α-rhamnosyl-β- glucosidase and its application to the synthesis of the new fluorogenic substrate 4-methylumbelliferyl-rutinoside

Transglycosylation potential of the fungal diglycosidase α-rhamnosyl-β-glucosidase was explored. The biocatalyst was shown to have broad acceptor specificity toward aliphatic and aromatic alcohols. This feature allowed the synthesis of the diglycoconjugated fluorogenic substrate 4-methylumbelliferyl...

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Autor principal: Mazzaferro, L.S
Otros Autores: Piñuel, L., Erra-Balsells, R., Giudicessi, S.L, Breccia, J.D
Formato: Capítulo de libro
Lenguaje:Inglés
Publicado: 2012
Acceso en línea:Registro en Scopus
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001 PAPER-23496
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245 1 0 |a Transglycosylation specificity of Acremonium sp. α-rhamnosyl-β- glucosidase and its application to the synthesis of the new fluorogenic substrate 4-methylumbelliferyl-rutinoside 
260 |c 2012 
270 1 0 |m Breccia, J.D.; INCITAP-CONICET (Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas), Departamento de Química, Universidad Nacional de la Pampa (UNLPam), Av. Uruguay 151, 6300 Santa Rosa, La Pampa, Argentina; email: javierbreccia@exactas.unlpam.edu.ar 
506 |2 openaire  |e Política editorial 
504 |a Malet, C., Planas, A., (1997) Biochemistry, 36, pp. 13838-13848 
504 |a Fukamizo, T., Hayashi, K., Tamoi, M., Fujimura, Y., Kurotaki, H., Kulminskaya, A., Kitaoka, M., (2008) Arch. Biochem. Biophys., 478, pp. 187-194 
504 |a Van Tilbeurgh, H., Claeyssens, M., De Bruyne, C.K., (1982) FEBS Lett., 149, pp. 152-156 
504 |a Matsumoto, H., Inaba, H., Kishi, M., Tominaga, S., Hirayama, M., Tsuda, T., (2001) J. Agric. Food Chem., 49, pp. 1546-1551 
504 |a Niesen, I.L.F., Dragsted, L.O., Ravn-Haren, G., Freese, R., Rasmussen, S.E., (2003) J. Agric. Food Chem., 51, pp. 2813-2820 
504 |a Sarry, J.E., Gunata, Z., (2004) Food Chem., 87, pp. 509-521 
504 |a Mazzaferro, L., Piñuel, L., Minig, M., Breccia, J.D., (2010) Arch. Microbiol., 192, pp. 383-393 
504 |a Mazzaferro, L.S., Breccia, J.D., (2011) Biocatal. Biotransform., 29, pp. 103-112 
504 |a Yamamoto, S., Okada, M., Usui, T., Sakata, K., (2002) Biosci. Biotechnol. Biochem., 66, pp. 801-807 
504 |a Miller, G.L., (1959) Anal. Chem., 31, pp. 426-428 
504 |a Piñuel, L., Mazzaferro, L.S., Breccia, J.D., (2011) Process Biochem., 46, pp. 2330-2335 
504 |a Lai, L.B., Gopalan, V., Glew, R.H., (1992) Anal. Biochem., 2, pp. 365-369 
504 |a Contin, M., Mohamed, S., Albani, F., Riva, R., Baruzzi, A., (2008) J. Chromatogr., B, 873, pp. 129-132 
504 |a Nonami, H., Fukui, S., Erra-Balsells, R., (1997) J. Mass Spectrom., 32, pp. 287-296 
504 |a Gholipour, Y., Nonami, H., Erra-Balsells, R., (2008) Anal. Biochem., 383, pp. 159-167 
504 |a Simerska, P., Kuzma, M., Monti, D., Riva, S., MacKova, M., Kren, V., (2006) J. Mol. Catal. B: Enzym., 39, pp. 128-134 
504 |a Zhow, L., Lu, C., Wang, G.-L., Geng, H.-L., Yang, J.-W., Chen, P., (2009) J. Asian Nat. Prod. Res., 11, pp. 18-23 
504 |a Peterson, J.J., Dwyer, J.T., Beecher, G.R., Bhagwat, S.A., Gebhardt, S.E., Haytowitz, D.B., Holden, J.M., (2006) J. Food Compos. Anal., 19, pp. 66-S73 
504 |a Tang, S.-Y., Yang, S.-J., Cha, H., Woo, E.-J., Park, C., Park, K.-H., (2006) Biochim. Biophys. Acta, 1764, pp. 1633-1638 
504 |a Tribolo, S., Berrin, J.-G., Kroon, P.A., Czjzek, M., Juge, N., (2006) J. Mol. Biol., 370, pp. 964-975 
504 |a Spangenberg, P., André, C., Dion, M., Rabiller, C., Mattes, R., (2000) Carbohydr. Res., 329, pp. 65-73 
504 |a Maugeri, F., Hernalsteens, S., (2007) J. Mol. Catal. B: Enzym., 49, pp. 43-49 
504 |a Zeng, X., Yoshino, R., Murata, T., Ajisaka, K., Usui, T., (2000) Carbohydr. Res., 325, pp. 120-131 
504 |a Borris, R., Krah, M., Brumer, H., Kerzhner, M.A., Ivanen, D.R., Eneyskaya, E.V., Elyakova, L.A., Neustroev, K.N., (2003) Carbohydr. Res., 338, pp. 1455-1467 
504 |a Kadi, N., Crouzet, J., (2006) Food Chem., 98, pp. 260-268 
504 |a Martearena, M., Daz, M., Ellenrieder, G., (2007) Biocatal. Biotransform., 26, pp. 177-185 
504 |a Heidecke, C.D., Parsons, T.B., Fairbanks, A.J., (2009) Carbohydr. Res., 344, pp. 2433-2438 
504 |a Doukyu, N., Ogino, H., (2010) Biochem. Eng. J., 48, pp. 270-282 
504 |a Fan, J.-Q., Takegawa, K., Iwahara, S., Kondo, A., Kato, I., Abeygunawardana, C., Lee, Y.C., (1995) J. Biol. Chem., 270, pp. 17723-17729 
504 |a Mauludin, R., Müller, R.H., (2008) Pharmacogenet./Pharmacogenomics Virtual J., 102 S. , http://www.aapsj.org 
520 3 |a Transglycosylation potential of the fungal diglycosidase α-rhamnosyl-β-glucosidase was explored. The biocatalyst was shown to have broad acceptor specificity toward aliphatic and aromatic alcohols. This feature allowed the synthesis of the diglycoconjugated fluorogenic substrate 4-methylumbelliferyl-rutinoside. The synthesis was performed in one step from the corresponding aglycone, 4-methylumbelliferone, and hesperidin as rutinose donor. 4-Methylumbelliferyl-rutinoside was produced in an agitated reactor using the immobilized biocatalyst with a 16% yield regarding the sugar acceptor. The compound was purified by solvent extraction and silica gel chromatography. MALDI-TOF/TOF data recorded for the [M+Na] + ions correlated with the theoretical monoisotopic mass (calcd [M+Na] +: 507.44 m/z; obs. [M+Na] +: 507.465 m/z). 4-Methylumbelliferyl-rutinoside differs from 4-methylumbelliferyl-glucoside in the rhamnosyl substitution at the C-6 of glucose, and this property brings about the possibility to explore in nature the occurrence of endo-β-glucosidases by zymographic analysis. © 2011 Elsevier Ltd. All rights reserved. 30.  |l eng 
536 |a Detalles de la financiación: Agencia Nacional de Promoción Científica y Tecnológica 
536 |a Detalles de la financiación: Universidad de Buenos Aires 
536 |a Detalles de la financiación: Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas 
536 |a Detalles de la financiación: Universidad Nacional de La Pampa 
536 |a Detalles de la financiación: This work was supported by Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas, Universidad Nacional de La Pampa, Universidad de Buenos Aires and Agencia Nacional de Promoción Científica y Técnica of Argentina. 
593 |a INCITAP-CONICET (Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas), Departamento de Química, Universidad Nacional de la Pampa (UNLPam), Av. Uruguay 151, 6300 Santa Rosa, La Pampa, Argentina 
593 |a CIHIDECAR-CONICET, Departamento de Química Orgánica, Universidad de Buenos Aires, Pabellón II, 3(er) P., 1428 Buenos Aires, Argentina 
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